ANEXO 2

ANEXO 2

Método de análisis para la determinación de la composición de ácidos grasos de los lípidos totales del tejido adiposo subcutáneo de cerdos ibéricos (Cromatografía gaseosa)

1. Principio.‒La alimentación que reciben los cerdos durante su cría y cebo determina en gran medida la composición de la grasa depositada en sus tejidos (adiposo y muscular).

A partir de la muestra representativa del lote de sacrificio, extracción a temperatura ambiente con disolvente o con horno microondas, de los lípidos totales. Obtención de los ésteres metílicos de los ácidos grasos por reacción con una solución de hidróxido de potasio y su posterior análisis por cromatografía gas-líquido.

El presente método es aplicable a la determinación de la composición de ácidos grasos de los lípidos totales en el tejido adiposo subcutáneo de cerdos ibéricos mediante cromatografía de gases.

2. Material y aparatos.

2.1 Material auxiliar adecuado.

2.2 Matraz de 125 mL con boca esmerilada.

2.3 Embudos de filtración y medio filtrante.

2.4 Bolsas estériles/asépticas (80 y/o 400 mL) para homogeneizador con o sin filtro y resistentes al disolvente.

2.5 Recipientes para microondas.

2.6 Tubos de ensayo de 5 mL y 10 mL.

2.7 Rotavapor unido a una bomba de vacío y baño de agua.

2.8 Bomba de vacío.

2.9 Centrífuga.

2.10 Cromatógrafo de gases con columna capilar, inyector de división de flujo y detector de ionización de llama.

2.11 Columna capilar con fase estacionaria polar o muy polar.

2.12 Micropipetas.

2.13 Microjeringa para cromatografía de gases.

2.14 Dosificadores.

2.15 Homogeneizador de palas.

2.16 Balanza analítica con precisión de 0,001 g.

2.17 Horno de microondas.

2.18 Picadora.

3. Reactivos.

3.1 Hidróxido de potasio en lentejas, calidad PA.

3.2 Metanol absoluto (99.8%) calidad PA.

3.3 Solución metanólica de hidróxido de potasio 2M: disolver, enfriando, 11,2 g de hidróxido de potasio (3.1) en 100 mL de metanol (3.2). Enfriar a temperatura ambiente.

3.4 Éter dietílico calidad PA, exento de peróxidos y de residuos.

Nota: El éter dietílico es altamente inflamable y puede dar lugar a la formación de peróxidos explosivos.

3.5 n-hexano, calidad PA.

3.6 Éter de petróleo calidad, PA.

3.7 n-heptano, calidad PA.

4. Procedimiento.

4.1 Preparación de la muestra en el laboratorio.

4.1.1 Obtención de tiras: cuando el ejemplar de muestra esté constituido por láminas, de cada una de las láminas recibidas, se cortará en el centro una tira de 2 a 5 mm, conservando piel y magro.

4.1.2 Picado/trituración y homogeneización de tiras: a las tiras obtenidas, se les eliminará únicamente la piel y el magro, y se triturarán/picarán (2.18) y homogeneizarán antes de iniciar la obtención de lípidos totales.

4.2 Obtención de lípidos totales:

4.2.1 A temperatura ambiente con disolvente.

Pesar, aproximadamente, 50 g de la muestra picada y homogeneizada. Introducirla en una bolsa de plástico estéril/aséptica, resistente al disolvente (2.4) y adicionar de 50 a 80 mL de éter dietílico (3.4). La bolsa se introduce en homogeneizador de palas (2.15) y se activa de 2 a 4 minutos. Transcurrido el tiempo de obtención de lípidos totales, el contenido de la bolsa se filtra (2.3) a un matraz (2.2) para separar el extracto del residuo sólido (tejido conectivo). El matraz con el extracto se lleva a rotavapor, bajo vacío, con baño calefactor entre 40 °C-50 °C (2.7) hasta eliminación del disolvente. De los lípidos totales contenidos en el matraz, una alícuota se trasvasa a viales o tubos de ensayo de 5 mL, mínimo (2.5) para almacenar y conservar, en su caso, en congelador a una temperatura inferior a ‒10 °C. La otra alícuota se destina a la preparación de los ésteres metílicos (4.3).

4.2.2 En horno de microondas.

Pesar, aproximadamente, 5 g de la muestra picada y homogeneizada en un recipiente adecuado (2.5). El recipiente, con la muestra se introduce en el horno microondas (2.17) y se procede a la fusión de la grasa.

Una vez realizada ésta, filtrar si fuera necesario, y trasvasar una alícuota del líquido obtenido a viales o tubos de ensayo de 5 mL, mínimo (2.6) para almacenar y conservar, en su caso, en congelador a una temperatura inferior a ‒10 °C. La otra alícuota se destina a la preparación de los ésteres metílicos (4.3).

Las condiciones operativas, orientativas, de la extracción con horno microondas son las siguientes:

Cantidad de muestra por recipiente: 5 g.

Potencia del horno microondas: al menos 700 w y 2450 MHz, con plato giratorio para que el calentamiento de la muestra sea homogéneo.

N.° de recipientes en cada proceso de extracción: de 9 a 12.

Potencia de funcionamiento: Aproximadamente entre 200 y 250 watios (Descongelación).

Tiempo de funcionamiento: de 8 a 9 minutos.

4.3. Preparación de los ésteres metílicos.

En tubo de ensayo de 10 mL (2.6), pesar con precisión de ±0,01 g, 0,20 g de los lípidos totales obtenidos según 4.2.1 ó 4.2.2. Añadir 4 mL de disolvente (3.5 ó 3.6 ó 3.7) y agitar suavemente hasta disolución de la grasa. A continuación adicionar 0,2 mL de disolución 2M de KOH en metanol (3.3). Agitar suavemente para favorecer la reacción. Dejar en reposo 30 minutos hasta clarificación total. Decantar la capa superior que es la que contiene los ésteres metílicos. Mantener la solución en el frigorífico hasta el análisis cromatográfico. No almacenar la solución más de 12 horas. A continuación, con ayuda de una microjeringa (2.13) tomar como mínimo 0,5 μL de la fase superior (disolución de los ésteres metílicos) e inyectar en el cromatógrafo de gases (2.10).

Nota: si transcurridos los 30 minutos no se obtuvo la clarificación total, centrifugar (2.9) hasta conseguirla, por ejemplo 30 segundos a 2000 r.p.m.

4.4. Cromatografía en fase gaseosa de los ésteres metílicos.

A modo de orientación, las condiciones operativas podrían ser las siguientes:

Columna Capilar.

Fase estacionaria: polar o muy polar.

Flujo de gas portador: dependiendo del diámetro interior de la columna.

T.ª Horno: desde un mínimo de 160 °C.

T.ª Inyector: mínimo 230 °C.

T.ª Detector (FID): mínimo 250 °C.

Relación de división de flujo: adecuada para la separación requerida.

Estas condiciones operativas deberán permitir una resolución de los ácidos aráquico y linolénico de, al menos, 1,5.

5. Expresión de resultados.

Se efectuará como % de área de los picos de los siguientes ácidos grasos:

C_12:0 Acido Láurico.

C_14:0 Acido Mirístico.

C_16:0 Acido Palmítico.

C_16:1 Acido Palmitoleico (incluidos isómeros).

C_17:0 Acido Margárico.

C_17:1 Acido Margaroleico.

C_18:0 Acido Esteárico.

C_18:1 Acido Oleico (incluidos isómeros).

C_18:2 Acido Linoleico (incluidos isómeros).

C_18:3 Acido Linolénico (incluidos isómeros).

C_20:0 Acido Aráquico.

C_20:1 Acido Gadoleico.

El total de áreas individuales de tales componentes debe ser el 100%.

Cálculo:

A modo de orientación, ver cromatograma de referencia, para la identificación de los picos, Figura adjunta.

6. Fiabilidad.—Repetibilidad: Precisión bajo condiciones de repetibilidad.

Condiciones de repetibilidad: condiciones bajo las que se obtienen resultados independientes, con el mismo método, sobre idénticas muestras, en el mismo laboratorio, por el mismo operador, y utilizando los mismos equipos de medición, durante un corto intervalo de tiempo.

Reproducibilidad: Precisión bajo condiciones de reproducibilidad.

Condiciones de reproducibilidad: condiciones bajo las cuales los resultados se obtienen con el mismo método sobre muestras idénticas, en laboratorios diferentes, con operadores distintos y utilizando equipos diferentes.

Resultados de un estudio interlaboratorios:

Ver Tabla adjunta.

7. Referencias.—Norma UNE-EN ISO 5508:1990

FIGURA. CROMATOGRAMA DE REFERENCIA PARA LA IDENTIFICACIÓN DE LOS PICOS DE LOS ÁCIDOS GRASOS

TABLA

Resultados del estudio interlaboratorios realizado por el Grupo de Trabajo para la Normalización de la Toma de Muestras y Análisis de Grasa de Cerdo Ibérico (Determinación de la Calidad del Cerdo Ibérico) en mayo de 2000

Ac. Graso (%)	Tipo de muestra	L	n	m	Sr	r	RSDr	Sr	R	RSDr
C12:0	grasa	11	10	0,06	0,01	0,02	10,29	0,01	0,02	15,01
C12:0	bellota	11	11	0,07	0,01	0,01	6,95	0,01	0,03	16,73
C12:0	recebo	11	7	0,07	0,00	0,00	0,00	0,01	0,03	13,12
C12:0	pienso	11	11	0,08	0,01	0,02	10,90	0,01	0,04	17,12
C14:0	grasa	11	9	1,19	0,01	0,03	0,86	0,09	0,25	7,52
C14:0	bellota	11	11	1,35	0,03	0,08	2,01	0,10	0,27	7,15
C14:0	recebo	11	10	1,40	0,02	0,05	1,14	0,09	0,24	6,20
C14:0	pienso	11	11	1,43	0,03	0,08	1,95	0,12	0,33	8,16
C16:0	grasa	11	11	20,02	0,13	0,37	0,65	0,53	1,47	2,63
C16:0	bellota	11	11	20,64	0,20	0,56	0,96	0,43	1,21	2,10
C16:0	recebo	11	11	21,76	0,18	0,50	0,82	0,49	1,37	2,24
C16:0	pienso	11	11	24,49	0,19	0,52	0,75	0,71	1,99	2,90
C16:1	grasa	11	11	1,71	0,02	0,05	1,03	0,10	0,28	5,86
C16:1	bellota	11	11	2,47	0,02	0,07	0,99	0,13	0,35	5,04
C16:1	recebo	11	11	2,15	0,02	0,06	0,99	0,09	0,26	4,30
C16:1	pienso	11	10	2,01	0,02	0,05	0,91	0,11	0,31	5,56
C17:0	grasa	11	11	0,35	0,01	0,04	3,81	0,03	0,10	9,81
C17:0	bellota	11	11	0,33	0,01	0,04	4,02	0,03	0,09	9,89
C17:0	recebo	11	10	0,35	0,01	0,02	2,13	0,03	0,09	8,87
C17:0	pienso	11	11	0,35	0,01	0,02	2,42	0,04	0,11	11,40
C17:1	grasa	11	11	0,31	0,02	0,05	5,95	0,03	0,07	8,21
C17:1	bellota	11	10	0,35	0,02	0,05	5,09	0,03	0,08	7,75
C17:1	recebo	11	10	0,33	0,01	0,03	3,27	0,03	0,08	8,97
C17:1	pienso	11	10	0,30	0,01	0,02	2,68	0,03	0,09	10,82
C18:0	grasa	11	11	9,73	0,03	0,10	0,35	0,15	0,42	1,52
C18:0	bellota	11	11	8,72	0,07	0,19	0,79	0,21	0,59	2,43
C18:0	recebo	11	11	10,12	0,06	0,16	0,55	0,32	0,90	3,17
C18:0	pienso	11	11	14,16	0,09	0,24	0,60	0,61	1,72	4,33
C18:1	grasa	11	11	54,96	0,15	0,41	0,27	0,59	1,64	1,07
C18:1	bellota	11	11	54,96	0,17	0,47	0,31	0,48	1,34	0,87
C18:1	recebo	11	11	51,80	0,17	0,48	0,33	0,78	2,17	1,50
C18:1	pienso	11	11	47,18	0,12	0,35	0,26	0,90	2,51	1,90
C18:2	grasa	11	11	9,18	0,06	0,17	0,68	0,16	0,44	1,72
C18:2	bellota	11	10	8,29	0,05	0,13	0,57	0,27	0,77	3,30
C18:2	recebo	11	11	9,59	0,04	0,10	0,36	0,28	0,79	2,95
C18:2	pienso	11	11	7,63	0,04	0,11	0,50	0,42	1,17	5,49
C18:3	grasa	11	9	0,55	0,01	0,03	1,94	0,05	0,14	9,33
C18:3	bellota	11	11	0,94	0,03	0,09	3,30	0,09	0,26	9,87
C18:3	recebo	11	10	0,76	0,03	0,09	4,20	0,05	0,14	6,73
C18:3	pienso	11	11	0,50	0,01	0,04	2,56	0,07	0,19	13,18
C20:0	grasa	11	10	0,20	0,01	0,02	3,76	0,02	0,05	9,03
C20:0	bellota	11	10	0,18	0,01	0,03	5,99	0,02	0,07	13,46
C20:0	recebo	11	11	0,18	0,01	0,04	7,27	0,03	0,07	14,42
C20:0	pienso	11	11	0,25	0,02	0,05	7,78	0,03	0,09	12,74
C20:1	grasa	11	11	1,70	0,04	0,11	2,29	0,11	0,32	6,62
C20:1	bellota	11	10	1,68	0,03	0,07	1,51	0,14	0,40	8,45
C20:1	recebo	11	11	1,42	0,02	0,05	1,26	0,08	0,22	5,62
C20:1	pienso	11	11	1,47	0,03	0,08	2,00	0,11	0,30	7,29

L: n° de laboratorios participantes

n: n° de resultados aceptados

m: media

Sr: desviación típica de la repetibilidad

r: repetibilidad

RSDr: desviación típica relativa de la repetibilidad

S_R: desviación típica de la reproducibilidad

R: reproducibilidad

RSD_R: desviación típica relativa de la reproducibilidad